Chapitres
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- eFig. 5-1 - Anatomie macroscopique de la voie visuelle principale en coupe axiale passant par les noyaux géniculés latéraux en vue de profil gauche
- eFig. 5-2 - Le traitement de l'information visuelle par les CGR aboutit à des canaux parallèles
- eFig. 5-3 - Les circuits ON et OFF de la rétine.
- eFig. 5-4 - Champ récepteur d'une CGR à centre ON à gauche et à centre OFF à droite
- eFig. 5-5 - Exemple de réponse tonique (ligne du milieu) ou phasique (ligne du bas) d?une CGR à centre ON qui est excité (à gauche) ou inhibé (à droite)
- eFig. 5-6 - Champ récepteur du canal parvocellulaire avec de gauche à droite : une CGR naine à centre rouge ON, à centre rouge OFF, à centre vert ON et à centre vert OFF
- eFig. 5-7 - Champs récepteurs du canal koniocellulaire :
- eFig. 5-8 - Anatomie macroscopique de la voie rétinocolliculaire et du système optique accessoire en coupe axiale passant par les noyaux géniculés latéraux en vue de profil gauche
- eFig. 5-9 - Anatomie macroscopique de la voie rétino-prétectale et rétino-hypothalamique en coupe axiale passant par les noyaux géniculés latéraux en vue de profil gauche
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- Vidéo 9.1 - TF-BUT instable
- Vidéo 9.2 - Signe de Van Herick
- Vidéo 9.3 - Van Herick normal
- Vidéo 9.4 - Examen OCT
- eFig.9-1 - Photographie de l'oeil d'un patient après coloration au vert de lissamine
- eFig. 9-2 - Principe de la microscopie confocale (faisceau réfléchi en vert)
- eFig. 9-3 - Relevé d'écran d'accueil HRT
- eFig. 9-4 - Ligne de contour et plan de référence HRT
- eFig. 9-5 - Données stéréométriques
- eFig. 9-6 - Analyse de régression de Moorfields
- eFig. 9-7 - Score de probabilité de glaucome
- eFig. 9-8 - Tracé interactif HRT
- eFig. 9-9 - Schéma optique de l'interféromètre de Michelson
- eFig. 9-10 - Principe de fonctionnement de l'imagerie par optique adaptative
- eFig. 9-11 - Élongation des pores en inférieur correspondant à un déficit supérieur du champ visuel
- eFig. 9-12 - Élongation des pores en supérieur correspondant à un déficit supérieur des fibres nerveuses rétiniennes à l'OCT
- eFig. 9-13 - Imagerie de l'atrophie péripapillaire en optique adaptative
- eFig. 9-14 - Aspect des vaisseaux prépapillaires en optique adaptative.
- eFig. 9-15 - Aspect des fibres nerveuses en optique adaptative
- eFig. 9-16 - Programmes C-20 et N-30
- eFig. 9-17 - Programmes 10-2 et Macula
- eFig. 9-18 - Relevé de test de seuil N-30-F
- eFig. 9-19 - Installation du patient et positionnement de la tête
- eFig. 9-20 - Courbe de sensibilité au contraste pour trois âges différents
- eFig. 9-21 - Une des planches de l'album HRR
- eFig. 9-22 - Les pions sont sortis et mélangés de façon aléatoire. Le patient doit les reclasser en partant du premier pion qui est fixe (100 Hue)
- eFig. 9-23 - Ce schéma en cercle ouvert permet la visualisation directe de l'axe de confusion
- eFig. 9-24 - MVEP et PEV multifréquence
- eFig. 9-25 - L'effet Doppler
- eFig. 9-26 - Fluxmétrie laser Doppler
- eFig. 9-27 - Principe du fluxmètre laser Doppler de la tête du nerf optique
- eFig. 9-28 - Méthode entoptique du champ bleu
- eTableau 9-1 - Conversion de la taille de la papille mesurée à la lampe à fente en fonction du verre utilisé
- eCas clinique 9-1
- eCas clinique 9-2
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- eFig. 10-1 - Angle ouvert jusqu'à la bande ciliaire ici de couleur beige
- eFig. 10-2 - Insertion de la racine de l'iris très postérieure laissant une bande ciliaire très large de couleur brun
- eFig. 10-3 - Bande ciliaire brune, moins large ; le trabéculum est non pigmenté
- eFig. 10-4 - Angle ouvert jusqu'à la jonction mal définie entre la bande ciliaire et l'éperon scléral
- eFig. 10-5 - Angle grand ouvert jusqu'à la bande ciliaire, ici de couleur grise ; l'éperon scléral est bien défini, avec un trabéculum peu pigmenté
- eFig. 10-6 - Quelques procès iriens couvrant la bande ciliaire. Le trabéculum présente une pigmentation foncée peu dense
- eFig. 10-7 - Angle ouvert jusqu'à la jonction entre la bande ciliaire et l'éperon scléral ; trabéculum complètement sans pigment
- eFig. 10-8 - Iris périphérique convexe à cause d'un bloc pupillaire relatif assez important
- eFig. 10-9 - Insertion de l'iris assez haute, au niveau de l'éperon scléral ; trabéculum peu pigmenté
- eFig. 10-10 - Iris périphérique fenêtré créant des bandes larges de procès iriens
- eFig. 10-11 - Procès iriens en nappe couvrant la bande ciliaire, léperon scléral et le trabéculum de façon irrégulière selon lendroit :
- eFig. 10-12 - Procès iriens en nappe plus dense sur la bande ciliaire et moins dense sur le trabéculum
- eFig. 10-13 - Niveau de sévérité pressionnelle d?un GPAO à partir de courbes diurnes de PIO
- eFig. 10-14 - Évaluation de l'efficacité d'un traitement hypotenseur oculaire :
- eFig. 10-15 - Suivi en périmétrie automatisée standard et en Matrix™ d'un sujet de 63 ans présentant un déficit débutant
- eFig. 10-16 - 15 Hue désaturé chez un patient de 45 ans... :
- eFig. 10-17 - Patient de 51 ans présentant un glaucome bilatéral très évolué et se plaignant à la fois d'une photophobie et d'une cécité nocturne
- eCas clinique 10-1A
- eCas clinique 10-1B
- eCas clinique 10-1C
- eCas clinique 10-1D
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- eCas clinique 10-4F
- eCas clinique 10-4G
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- eFig. 11-1 - Sélection des examens HRT dans le temps
- eFig. 11-2 - Analyse de la variation des paramètres stéréométriques
- eFig. 11-3 - Exemple de suivi dans le temps des données stéréométriques (excavation) avec une stabilité des paramètres
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- eTableau 12-1 - Causes de surestimation de mesure de la PIO
- eTableau 12-2 - Causes de sous-estimation de mesure de la PIO
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- eFig. 13-1 - Trois images UBM illustrant une insertion ciliaire basale, médiane et distale de l'iris
- eTableau 13-1 - Prévalence du GPAO dans les études épidémiologiques réalisant un dépistage... :
- eTableau 13-2 - Prévalence du GPAO en fonction de la classe dâge dans des populations composées partiellement ou complètement de sujets mélanodermes :
- eCas clinique 13-1
- eCas clinique 13-2 enoncé
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- eCas clinique 13-4A
- eCas clinique 13-4B
- eCas clinique 13-4C
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- Vidéo 14.1 - L'iridotomie périphérique dans la dispersion pigmentaire
- eFig. 14-1 - Fuseaux de Krukenberg
- eFig. 14-2 - Fermeture de l'angle en OCT
- eFig. 14-3 - UBM iris plateau
- eCas clinique 14-1enoncé
- eCas clinique 14-1A
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- eCas clinique 14-2A
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- eCas clinique 14-3A
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- eCas clinique 14-4A
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- eCas clinique 14-5enoncé
- eCas clinique 14-5A
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- eCas clinique 14-7A
- eCas clinique 14-7B
- eCas clinique 14-7C
- eCas clinique 14-7D
- eCas clinique 14-7E
- eCas clinique 14-7F
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- Vidéo 16.1 - Réalisation d'une trabéculoplastie SLT
- Vidéo 16.2 - La trabéculectomie
- Vidéo 16.3 - Needling
- Vidéo 16.4 - Réfection de bulle défectueuse
- Vidéo 16.5 - Viscocanaloplastie
- eFig. 16-1 - Lésions obtenues dans un gel thermosensible
- eFig. 16-2 - Implant Aquaflow® (Staar Surgical AG) :
- eFig. 16-3 - Coupe d'OCT de segment antérieur de type Spectralis® :
- eFig. 16-4 - Implant T-Flux® (laboratoires IOLtech) en acrylique hydrophile dont les branches sont insérées dans les orifices du canal de Schlemm
- eFig. 16-5 - Mise en place d'un implant T-Flux® (laboratoires IOLtech)
- eFig. 16-6 - Implant T-Flux® en Poly-Megma®
- eFig. 16-7 - Implant en croix en PMMA
- eFig. 16-8 - Implant ESNOPER V2000 en 2-hydroxy-éthyl-méta-acrylate
- eFig. 16-9 - Implant en collagène porcin Aquaflow® sous forme sèche
- eFig. 16-10 - Implant en collagène porcin Aquaflow® après hydratation
- eFig. 16-11 - Implant en acide hyaluronique SK-Gel®
- eTableau 16-1a - Efficacité de la SLT signalée dans les différentes études
- eTableau 16-1b - Efficacité de la SLT signalée dans les différentes études
- eTableau 16-1c - Efficacité de la SLT signalée dans les différentes études
- eTableau 16-1d - Efficacité de la SLT signalée dans les différentes études
- eTableau 16-2a - Synthèse des effets indésirables au SLT signalés dans des études scientifiques
- eTableau 16-2b - Synthèse des effets indésirables au SLT signalés dans des études scientifiques
- eTableau 16-2c - Synthèse des effets indésirables au SLT signalés dans des études scientifiques
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- eCas clinique 17-1
- eCas clinique 17-2
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- eCas clinique 20-1
- eCas clinique 20-2