Une revascularisation rapide et adéquate des îlots pancréatiques après transplantation est essentielle pour leur survie et leur fonction. Cependant, les mécanismes cellulaires impliqués dans la revascularisation des îlots restent inconnus et doivent être élucidés. Le but de ce travail était d’étudier les voies angiogéniques nécessaires à la revascularisation des îlots pancréatiques in vitro.

Des îlots pancréatiques de Rat ont été mis en culture pendant 0, 12, 24 et 48h L’identification des voies de signalisation impliquées dans l’angigenèse a été réalisée par PCR array. 84 gènes sont analysés à l’aide du RT² Profiler PCR Array Data Analysis Template v3.2. L’étude comparative de l’expression génique a été faite par rapport à t=0h (n=3).

Après 12h de culture, les îlots présentent une diminution significative de l’expression des gènes des facteurs de croissance et de leurs récepteurs tels que l’Igf1, le Kdr avec respectivement −18,42 et −5,65 fois (p<0,001) qui est maintenue durant 48h Aucune modulation significative de l’expression des VEGF A, B et C est observée au cours de l’étude. Au même temps, la métallopeptidase 9 (MMP9) est 16,1 fois surexprimé à 12 h alors que son inhibiteur, Timp1, l’est d’un facteur 55,01 (p<0,001). Cet environnement défavorable à l’angiogenèse se confirme, puisqu’à 48h de culture, la MMP9 n’est plus surexprimée contrairement à Timp1 (20,3 fois, p<0,01). Enfin, il faut attendre 48h de culture pour observer une augmentation significative de l’expression de gènes de la matrice extracellulaire tels que le procollagène 181 (5,61 fois, p<0,05).

Cette étude a montré que les conditions actuelles de culture ne sont pas favorables à une bonne revascularisation des îlots post transplantation. Le développement de nouvelles cibles pharmacologiques devrait permettre d’adapter l’environnement de culture à une meilleure implantation in vivo.