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Identification des mutations somatiques et analyse des mécanismes immunologiques au cours des manifestations auto-immunes et/ou inflammatoires associées à la leucémie myélomonocytaire chronique - 28/11/23

Doi : 10.1016/j.revmed.2023.10.051 
A. Le Pogam 1, , O. Debeaupuis 2, C. Etienne 3, V. Jachiet 4, C. Chenevier-Gobeaux 5, L. Le Clech 6, J. Decroocq 7, P. Laurent 8, A. Bidet 9, P. Fenaux 10, N. Stocker 11, M.A. Couturier 12, A. Deroux 13, S. Dimicoli-Salazar 14, E. Lazaro 15, L.P. Zhao 16, N. Abisror 17, D. Selimoglu-Buet 18, O. Fain 19, O. Hermine 20, E. Solary 21, J. Rossignol 22, A. Mekinian 19, F. Rieux-Laucat 23, J. Hadjadj 24
1 Médecine interne et immunologie clinique, hôpital Saint-Antoine, AP–HP, Paris 
2 Unité FRL, Imagine Inst Malad Gen Necker-Malades, Paris 
3 Médecine interne, hôpital Ambroise-Paré, AP–HP, Boulogne-Billancourt 
4 Médecine interne, hôpital Saint-Antoine, AP–HP, Paris 
5 Biochimie, hôpital Cochin, Paris 
6 Médecine interne, maladies infectieuses et du sang, CH de Cornouaille Quimper-Concarneau, Quimper 
7 Hématologie, hôpital Cochin, Paris 
8 Hématologie, hôpital Saint-Vincent-De-Paul, Lille 
9 Laboratoire hématologie, CHU Bordeaux – Haut-Lévêque, Bordeaux 
10 Hématologie, Saint-Louis, 1, avenue Claude-Vellefaux, Paris 
11 Service de médecine interne et maladies infectieuses, centre hospitalier Manchester, Charleville-Mézières 
12 Hématologie, INNOVEO, le fonds de dotation, CHRU de Brest, Brest 
13 Médecine interne, CHU Grenoble, boulevard de la Chantourne, La Tronche 
14 Hématologie, CHU Haut-Lévêque, Pessac 
15 Médecine interne, centre hospitalier universitaire de Bordeaux, Bordeaux 
16 Hématologie, hôpital Saint-Louis, AP–HP, Paris 
17 Médecine interne, hôpital Saint-Antoine, Paris 
18 Laboratoire d’hématologie, institut Gustave-Roussy Chevilly-Larue, Chevilly-Larue 
19 Médecine interne, hôpital Saint-Antoine, 184, rue du Faubourg-Saint-Antoine, Paris 
20 Hématologie, hôpital Necker, 149, rue de Sèvres, Paris 
21 Hématologie, IGR, Villejuif 
22 Hématologie clinique, hôpital Necker, 149, rue de Sèvres, Paris 
23 Institut imagine, université Paris Descartes Sorbonne, Paris 
24 Médecine interne, Cochin Port-Royal, Paris 

Auteur correspondant.

Résumé

Introduction

La leucémie myélomonocytaire chronique (LMMC) est une maladie hématologique clonale à la frontière entre les syndromes myélodysplasiques (SMD) et aux syndromes myéloprolifératifs. Elle est associée dans 10 à 30 % des cas à des manifestations inflammatoires et/ou auto-immunes (MAII) de présentation clinique polymorphe, de sévérité variable, avec une proportion importante de patients corticodépendants ou réfractaires aux immunosuppresseurs conventionnels. Les mécanismes physiopathologiques précis à l’origine de ces MAII restent inconnus mais pourraient impliquer des troubles de l’homéostasie immunologique et l’acquisition de mutations somatiques dans la lignée myéloïde. L’objectif de cette étude était d’identifier de nouvelles mutations somatiques à l’origine des MAII et d’évaluer le profil cytokinique et les populations immunologiques impliquées.

Patients et méthodes

Treize patients avec une LMMC et une MAII active au moment du prélèvement (manifestation clinique et CRP>10mg/L) ont été inclus et comparés à 10 patients avec LMMC sans MAII et à 7 sujets contrôles appariés sur l’âge. Les analyses d’exome ont été réalisées sur de l’ADN extrait à partir de sang total de patients avec LMMC avec et sans MAII. L’exploration immunologique a comporté un dosage de 96 cytokines (Eve Technologies) et de calprotectine (protéine S100A8/A9) sur plasma. Les populations immunologiques ont été explorées par cytométrie de masse (CyTOF) à partir des cellules mononuclées extraites du sang périphérique.

Résultats

Les MAII les plus fréquentes étaient des rhumatismes inflammatoires (69 %), des atteintes cutanées (46 %) et des atteintes digestives (31 %). Au moment du prélèvement, la CRP médiane était de 63mg/L, six patients étaient traités par corticothérapie (posologie moyenne de 19mg/j), aucun patient ne recevait de biothérapie ou d’agent hypométhylant. Douze patients (92 %) présentaient une LMMC-1 et 4 (31 %) étaient prolifératifs (leucocytes>13G/L). Le profil mutationnel des patients montrait une prédominance de mutation TET2 et SRSF2 chez les patients LMMC avec et sans MAII sans différence en termes de fréquence de variant allélique (VAF), ainsi qu’une proportion plus importante de patient avec mutation NRAS (25 % vs 14 %) et KRAS (50 % vs 0 %) chez les LMMC avec MAII par rapport aux LMMC sans MAII. L’analyse d’exome n’a pas mis en évidence de mutation partagée par l’ensemble des patients LMMC potentiellement responsable des MAII. Six patients présentaient une mutation dans des gènes impliqués dans plusieurs voies inflammatoires (NFkB et interférons notamment) incluant TNFAIP3, TREX1, IFIH1, RIPK1 ou NLRP12 avec une VAF potentiellement compatible avec une origine somatique. L’analyse cytokinique a mis en évidence un taux de calprotectine significativement plus élevé (23,0mg/L vs 1,5mg/L, p=0,0024) et une tendance à l’élévation du TNFα (328,9 vs 91,3μg/L, p=0,08) chez les patients LMMC avec MAII en comparaison avec les patients LMMC sans MAII et les sujets sains. Une proportion significativement plus importante de monocytes classiques avec perte de l’expression HLA-DR a été observée chez les patients LMMC avec MAII par rapport aux LMMC sans MAII. On ne retrouvait pas d’anomalies significatives de répartition des populations lymphocytaires B/T, des cellules dendritiques ou des lymphocytes natural killer.

Conclusion

Ce travail exploratoire a mis en évidence une augmentation des monocytes classiques HLA-DRnégatif et de la sécrétion de calprotectine chez les patients avec une LMMC avec MAII par rapport aux patients LMMC sans MAII. L’analyse d’exome ouvre des pistes intéressantes avec des mutations dans des gènes candidats régulant plusieurs voies inflammatoires, dont l’origine somatique et l’impact fonctionnel reste à démontrer. Nous poursuivons ces travaux afin d’augmenter l’effectif de notre cohorte et d’autres analyses sont actuellement en cours incluant l’étude transcriptomique des monocytes et de l’architecture clonale de la lignée myéloïde.

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Vol 44 - N° S2

P. A354 - décembre 2023 Retour au numéro
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  • Recommandations du GEFA pour l’utilisation des immunosuppresseurs et thérapies ciblées dans l’artérite à cellules géantes
  • H. De Boysson, V. Devauchelle, C. Agard, M. Andre, A. Aouba, B. Bienvenu, B. Bonnotte, G. Carvajal Alegria, O. Espitia, H. Emmanuel, M. Lambert, J.C. Lega, K.H. Ly, A. Mekinian, J. Morel, A. Régent, C. Richez, L. Sailler, R. Seror, A. Tournadre, M. Samson
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