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Modeling inherited short-coupled polymorphic ventricular tachycardia using patient specific hiPSC-derived cardiomyocytes and CRISPR/Cas 9 technology - 28/12/21

Doi : 10.1016/j.acvdsp.2021.09.309 
Y. Sleiman 1, , M. Souidi 1, R. Kumar 2, E. Yang 2, F. Jaffré 2, T. Zhou 2, A. Bernardin 1, S. Reiken 3, O. Cazorla 1, A.V. Kajava 4, A. Moreau 1, J. Pasquié 1, 5, A. Marks 3, B.B. Lerman 6, S. Chen 2, J.W. Cheung 6, T. Evans 2, A. Lacampagne 1, A. Meli 1
1 PhyMedExp, Inserm, CNRS, university of Montpellier, Montpellier, France 
2 Department of surgery, Weill Cornell medical college, New York, USA 
3 Department of physiology and cellular biophysics, Clyde and Helen Wu center for molecular cardiology, Columbia university college of physicians and surgeons, New York, USA 
4 CRBM, CNRS, university of Montpellier, Montpellier, France 
5 Department of cardiology, CHU of Montpellier, Montpellier, France 
6 Division of cardiology, Weill Cornell medical college, New York, USA 

Corresponding author.

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Riassunto

Introduction

Polymorphic ventricular tachycardia (PMVT) can occur in patients with structurally normal hearts and in 8% of cases can lead to sudden cardiac death, typically exercise-induced. The role of the cardiac type 2 ryanodine receptor (RyR2) in pathogenesis of PMVT presenting at rest is unclear.

Purpose

We aimed here at modelling PMVT observed in a patient harboring the RyR2-H29D mutation by comparing the molecular and functional properties of RyR2-H29D hiPSC-derived cardiomyocytes (hiPSC-CMs) with their isogenic control counterparts with a particular focus on the RyR2 properties.

Methods

We collected blood samples from the patient and generated several clones of RyR2-H29D hiPSC, in addition to generating an isogenic control by reverting the RyR2-H29D mutation using CRIPSR/Cas9 technology. We used fluorescent confocal microscopy, patch-clamp and video-image-based analysis to investigate the molecular and functional consequences of the RyR2-H29D mutation.

Results

We first hypothesized that PMVT hiPSC-CMs expressing the RyR2-H29D mutation would exhibit abnormal Ca2+ homeostasis. Thus, we measured and analyzed the intracellular Ca2+ variation. We found that the RyR2-H29D hiPSC-CMs exhibit clone-independent aberrant properties including intracellular sarcoplasmic reticulum (SR) Ca2+ leak through RyR2 under physiological pacing. The contribution of inositol 1,4,5-trisphosphate receptors to excitation-contraction coupling exacerbate the abnormal intracellular Ca2+ release in the RyR2-H29D hiPSC-CMs. Moreover, the RyR2-H29D hiPSC-CMs exhibit RyR2 post-translational remodeling, shorter action potentials, delayed afterdepolarizations, arrhythmias and aberrant contractile properties compared to isogenic controls. These abnormalities are fully reversed with isogenic control.

Conclusions

Our results suggest that RyR2-mediated Ca2+ leak induces an impairment of Ca2+ homeostasis and provide support to decipher the molecular mechanisms of short-coupled PMVT at rest.

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